La presión hacia la generación de ciencia con impacto en la sociedad es cada vez mayor. Recuerdo un singular método de protesta realizado por los investigadores en Francia cuando el presidente anunció la reducción al presupuesto para la investigación científica. En aquella ocasión, enviaron por correo a la presidencia varios artículos de su autoría, para que el ejecutivo con su "gran experiencia" en ciencias pueda distinguir entre buena ciencia y entre publicaciones que tienen impacto social o que son beneficiosas para la nación.
La verdad que podemos encontrar buenos argumento de cada lado. Muchas veces siento que en Ecuador se hace y se puede hacer "buena" ciencia. Personas publican sus trabajos en conferencias y revistas especializadas. Sin embargo, siempre queda el sin-sabor de estar a la altura de otros países pero no a la altura de los requerimientos del país propio. Como si, a más de investigar deberíamos trabajar para que los resultados se incluyan en los sistemas productivos y de bienestar.
Gobiernos de diferentes orientaciones se han visto tentados a usar el mismo argumento, algunos por falta de dinero y otros con ganas de desviar fondos a otros lugares (públicos o privados).
Hace poco leí la historia "simplificada" del análisis PCR, tan útil para toda la humanidad en estos momentos de COVID19. La historia está publicada en:
La moraleja, si existiera alguna, es que financiar proyectos que generen conocimiento en áreas diversas (no solo en las de impacto social o a la nación) ayuda a que otros métodos se puedan (o no) desarrollar con aplicaciones en otros ámbitos muy diferentes a las iniciales.
EXTRACTO
PCR (siglas en inglés de ‘Reacción en Cadena de la Polimerasa’) para localizar y amplificar fragmentos de material genético.
1966 sep. Thomas D. Brock (Universidad de Indiana) en el Parque Nacional de Yellowstone. Hudson Freeze recogieron muestras de Mushroom Spring.
El microorganismo anaranjado no creció, pero en algunas placas apareció una nueva bacteria que podía crecer hasta los 78 grados y que no podía hacerlo por debajo de los 45 (Thermus aquaticus).
1989 David H. Gelfand, empresa, Cetus (patente Taq polimerasa), por Kary Mullis (Premio Nobel 1993): la PCR. PCR es una especie de fotocopiadora molecular que permite realizar tantas copias como se quiera de un fragmento de ADN seleccionado.
La forma de seleccionar este fragmento y no otro consiste en mezclar el ADN de la muestra que se va a analizar con dos pequeños fragmentos de ADN que se denominan cebadores. Al calentar la muestra con estos cebadores, la doble cadena se separa. Al enfriarla a continuación, los cebadores se hibridan con el fragmento de ADN complementario de su secuencia. Si los hemos elegido correctamente, nuestros cebadores se unirán al principio y al final del gen que buscamos. En este momento, añadimos la enzima que duplica el ADN, la ADN polimerasa, para que se una al cebador y comience a replicar el ADN. La enzima no puede replicar una cadena de ADN a menos que parta desde un cebador, de ahí el nombre.
en cada ciclo, al calentar la muestra, la polimerasa se desnaturalizaba y había que volver a añadir más enzima.
1966 sep. Thomas D. Brock (Universidad de Indiana) en el Parque Nacional de Yellowstone. Hudson Freeze recogieron muestras de Mushroom Spring.
El microorganismo anaranjado no creció, pero en algunas placas apareció una nueva bacteria que podía crecer hasta los 78 grados y que no podía hacerlo por debajo de los 45 (Thermus aquaticus).
1989 David H. Gelfand, empresa, Cetus (patente Taq polimerasa), por Kary Mullis (Premio Nobel 1993): la PCR. PCR es una especie de fotocopiadora molecular que permite realizar tantas copias como se quiera de un fragmento de ADN seleccionado.
La forma de seleccionar este fragmento y no otro consiste en mezclar el ADN de la muestra que se va a analizar con dos pequeños fragmentos de ADN que se denominan cebadores. Al calentar la muestra con estos cebadores, la doble cadena se separa. Al enfriarla a continuación, los cebadores se hibridan con el fragmento de ADN complementario de su secuencia. Si los hemos elegido correctamente, nuestros cebadores se unirán al principio y al final del gen que buscamos. En este momento, añadimos la enzima que duplica el ADN, la ADN polimerasa, para que se una al cebador y comience a replicar el ADN. La enzima no puede replicar una cadena de ADN a menos que parta desde un cebador, de ahí el nombre.
en cada ciclo, al calentar la muestra, la polimerasa se desnaturalizaba y había que volver a añadir más enzima.
